Principaux événements impliqués dans la myopathie de Duchenne

La myopathie de Duchenne est une maladie neuromusculaire rare, à progression rapide et mortelle, qui se manifeste presque exclusivement chez les garçons en raison de son mode de transmission génétique récessif lié au chromosome X. L’incidence globale de la myopathie de Duchenne est estimée entre 1/3500 et 1/5000 naissances masculines.1,2

En France, la dystrophie musculaire de Duchenne touche environ 3300 personnes ; chaque année 150 à 200 nouveau-nés garçons sont concernés.2,3

Les premiers symptômes apparaissent vers l’âge de 3 à 5 ans, avec des signes de maladresse et des difficultés à monter les escaliers ou une tendance à marcher sur la pointe des pieds.4,5 Une faiblesse musculaire, une élévation de la créatine kinase et un retard global du développement ou du développement moteur peuvent également être présents.4-6

La perte de la marche survient vers l’âge de 10 à 12 ans7, suivie d’une scoliose et de contractures musculaires qui se développent rapidement. L’atteinte des muscles respiratoires (y compris le diaphragme) conduit à une insuffisance respiratoire progressive qui nécessite une ventilation assistée vers l’âge de 20 ans. Bien que l’espérance de vie moyenne des patients atteints de myopathie de Duchenne ait augmenté au fil du temps, seuls quelques individus survivent au-delà de la trentaine, principalement du fait d’une insuffisance respiratoire ou d’une cardiomyopathie.4,5,8

Enfant blond marchant sur une allée pavée

Étiologie

La myopathie de Duchenne est causée par des mutations du gène DMD situé sur le chromosome X et constitue le plus grand gène humain connu. Comparé à d’autres gènes humains, le taux de mutation du gène DMD est élevé, avec plus de 7 000 mutations différentes identifiées à ce jour. Les mutations du gène DMD entraînent l’absence totale ou non fonctionnelle de dystrophine et le désassemblage du Complexe des Protéines Associées à la Dystrophine (CPAD) qui en découle. Le CPAD joue un rôle crucial dans la fonction musculaire, à la fois en tant qu’absorbeur de chocs pour minimiser les dommages induits par la contraction et en tant que centre de signalisation biochimique.7,9-13 La fonction musculaire dépend fortement de l’intégrité du CPAD dans les fibres.14

Illustration scientifique montrant la structure d’un chromosome et de l’ADN

Physiopathologie

Comme expliqué dans la section sur l’étiologie ci-dessus, le désassemblage du CPAD déclenche une séquence d’événements pathologiques qui provoquent à terme une faiblesse contractile dans les cellules musculaires : 15
1
Désassemblage du CPAD
2
Suractivation des HDAC
3
Dysfonctionnement mitochondrial
4
Inflammation chronique
5
Perturbation des FAPs
6
Inhibition de la myogenèse

Explorez ces courtes vidéos illustrant les différentes étapes des principaux événements pathologiques dans la myopathie de Duchenne. ​

Prec
CPAD : Complexe des Protéines Associées à la Dystrophine, HDAC : Histones Désacétylases, FAPs : Progéniteurs Fibro-Adipogéniques, MuSC : Cellules souches musculaires
  1. Crisafulli S, Sultana J, Fontana A, et al. Global epidemiology of Duchenne muscular dystrophy: an updated systematic review and meta-analysis. Orphanet J Rare Dis. 2020;15(1):141.
  2. Protocole National de Diagnostic et de Soins (PNDS) 2019 – Dystrophie musculaire de Duchenne.
  3. Site web : AFM-Téléthon – Dystrophie musculaire de Duchenne. https://www.afm-telethon.fr/fr/fiches-maladies/dystrophie-musculaire-de-duchenne
  4. Guiraud S, Chen H, Burns DT, et al. Advances in genetic therapeutic strategies for Duchenne muscular dystrophy. Exp Physiol. 2015;100(12):1458-67.
  5. Van Ruiten H, Bushby K, Guglieri M. State-of-the-art advances in Duchenne muscular dystrophy. EMJ. 2017;2(1):90-9.
  6. Vaillend C, Aoki Y, Mercuri E, et al. Duchenne muscular dystrophy: recent insights in brain related comorbidities. Nat Commun. 2025;16(1):1298.
  7. Nallamilli BRR, Chaubey A, Valencia CA, et al. A single NGS-based assay covering the entire genomic sequence of the DMD gene facilitates diagnostic and newborn screening confirmatory testing. Hum Mutat. 2021;42(5):626-38.
  8. Duan D, Goemans N, Takeda S,, et al. Duchenne muscular dystrophy. Nat Rev Dis Primers. 2021;7(1):13.
  9. Birnkrant DJ, Bushby K, Bann CM, et al. Diagnosis and management of Duchenne muscular dystrophy, part 1: diagnosis, and neuromuscular, rehabilitation, endocrine, and gastrointestinal and nutritional management. Lancet Neurol. 2018;17(3):251-67.
  10. Bladen CL, Salgado D, Monges S, et al. The TREAT- NMD DMD Global Database: analysis of more than 7,000 Duchenne muscular dystrophy mutations. Hum Mutat. 2015;36(4):395-402.
  11. Min YL, Bassel-Duby R, Olson EN. CRISPR Correction of Duchenne Muscular Dystrophy. Annu Rev Med. 2019;70:239-55.
  12. Fratter C, Dalgleish R, Allen SK, et al. EMQN best practice guidelines for genetic testing in dystrophinopathies. Eur J Hum Genet. 2020;28(9):1141–59.
  13. Constantin B. Dystrophin functions as a scaffold protein for signalling proteins. Biochim Biophys Acta. 2014;1838(2):635-642.
  14. Ervasti and Campbell. A role for the dystrophin-glycoprotein complex as a transmembrane linker between laminin and actin. J Cell Biol. 1993;122(4):809-23.
  15. Ohlendieck and Swandulla. Complexity of skeletal muscle degeneration: multi-systems pathophysiology and organ crosstalk in dystrophinopathy. Eur J Phys. 2022;473:1813-1839.
  16. Kodippili K, Rudnicki MA. Satellite cell contribution to disease pathology in Duchenne muscular dystrophy. Front Physiol. 2023;14:1180980. doi:10.3389/fphys.2023.1180980
  17. Consalvi S, Saccone V, Giordani L, et al. Histone deacetylase inhibitors in the treatment of muscular dystrophies: epigenetic drugs for genetic diseases. Mol Med. 2011;17(5-6):457-465. doi:10.2119/molmed.2011.00049.
  18. Dowling P, Swandulla D, Ohlendieck K. Cellular pathogenesis of Duchenne muscular dystrophy: progressive myofibre degeneration, chronic inflammation, reactive myofibrosis and satellite cell dysfunction. Eur J Transl Myol. 2023;33(4):11856.
  19. Núñez-Álvarez Y, Hurtado E, Muñoz M, et al. Loss of HDAC11 accelerates skeletal muscle regeneration in mice. FEBS J. 2021;288(4):1201-1223. 
  20. Giuliani G, Rosina M, Reggio A. Signaling pathways regulating the fate of fibro/adipogenic progenitors (FAPs) in skeletal muscle regeneration and disease. FEBS J. 2022;289(21):6484–6517. doi:10.1111/febs.16080.
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